产品名称：α-Bungarotoxin-AF700的荧光检测
一、荧光检测原理与特性
检测机制：AF700的近红外发射信号通过共聚焦显微镜、流式细胞术或活体成像系统捕获，实现nAChRs的特异性标记与动态追踪。
优势特性：
高特异性：α-Bungarotoxin仅结合nAChRs的α1/α7亚基，确保标记准确性。
低背景干扰：近红外光避开生物组织自发荧光，提升信噪比。
多色兼容性：可与绿色（如AF488）、蓝色（如CF405M）或红色（如AF647）染料联用，实现多目标共定位。
光稳定性：长时间激发下信号衰减缓慢，适合活细胞/活体动态监测。
二、检测步骤与操作要点
1. 样本准备
细胞/组织处理：固定样本用4%甲醛短时处理（5分钟），活细胞直接孵育；封闭非特异性位点（如1% BSA-PBS缓冲液）。
探针稀释：用PBS/HBSS缓冲液配制工作液（1–5 μg/mL），避光操作，现配现用。
2. 孵育与洗涤
孵育条件：活细胞室温/37℃避光孵育15–30分钟；固定样本延长至30–60分钟。
洗涤步骤：PBS清洗3次，彻底去除未结合探针。
3. 检测方法
显微镜成像：配置远红滤光片组（激发690 nm，发射720 nm），适用于共聚焦/超分辨成像，研究受体分布、内吞/外排动态。
流式细胞术：640–645 nm激光激发，检测APC-Cy7或类似通道（660–720 nm），定量分析受体表达水平。
活体成像：利用近红外穿透力，追踪活体动物模型中的受体分布与药物递送路径。
4. 对照与验证
阴性对照：未染色样本或无关荧光抗体设定基线。
特异性验证：通过受体阻断剂（如BSpep肽）或竞争性抑制实验（预孵育未标记α-Bungarotoxin）确认信号特异性。


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