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L-DOX的制备：
L-DOX的脂质组成为HSPC/胆固醇/DSPE-PEG2000（11：8：1mol/mol）。阿霉素脂质体是通过远程加载制备的，它由跨膜硫酸铵梯度驱动。脂质体中DOX的浓度为2 mg/mL。采用Sephadex G50尺寸排除柱测定DOX脂质体的封装效率。采用UPLC-MS/MS系统分析DOX的浓度。DOX和内标（IS）（柔红霉素）检测为带电离子。
F-DOX和T-DOX的分离和提取：
采用Oasis HLB柱，采用SPE方法从E-DOX中分离血浆中的F-DOX。在没有真空的情况下，装载离子体样品。然后用水清洗HLB柱，然后用乙酸的甲醇洗脱，以洗脱吸附在HLB柱上的F-DOX。洗脱后的溶液用氮气干燥，残渣用初始流动相重悬。采用液-液萃取（LLE）提取血浆中的T-DOX硼酸盐缓冲液加入样品，用氯仿提取，然后浓缩。有机层用氮气干燥，用初始流动相重组。
F-DOX、T-DOX和IS的色谱图
(A)不添加DOX和IS的空白血浆样品；
(B)LLOQ样品；
(C)静脉注射后采集的真实血浆样本。
L-DOX的脂质组成为HSPC/胆固醇/DSPE-PEG2000（11：8：1mol/mol）。阿霉素脂质体是通过远程加载制备的，它由跨膜硫酸铵梯度驱动。脂质体中DOX的浓度为2 mg/mL。采用Sephadex G50尺寸排除柱测定DOX脂质体的封装效率。采用UPLC-MS/MS系统分析DOX的浓度。DOX和内标（IS）（柔红霉素）检测为带电离子。
F-DOX和T-DOX的分离和提取：
采用Oasis HLB柱，采用SPE方法从E-DOX中分离血浆中的F-DOX。在没有真空的情况下，装载离子体样品。然后用水清洗HLB柱，然后用乙酸的甲醇洗脱，以洗脱吸附在HLB柱上的F-DOX。洗脱后的溶液用氮气干燥，残渣用初始流动相重悬。采用液-液萃取（LLE）提取血浆中的T-DOX硼酸盐缓冲液加入样品，用氯仿提取，然后浓缩。有机层用氮气干燥，用初始流动相重组。
F-DOX、T-DOX和IS的色谱图
(A)不添加DOX和IS的空白血浆样品；
(B)LLOQ样品；
(C)静脉注射后采集的真实血浆样本。
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提升纳米粒子保存时间分散液
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